400 pièces de tampons dentaires colorés jetables micro

Les cotons-tiges optiques modèle LAB-10 sont utilisés pour nettoyer les petites optiques ou les petites zones d'une optique plus grande. Choisissez un produit à comparer lorsque l'option « Ajouter au comparateur » ou « Comparer » est affichée.

Français En gardant l'écouvillon dans le tube, la lyse a été réalisée en ajoutant 5 μL de NaCl 5 M et 45 μL de lysozyme Ready-Lyse (250 U/μL), suivi d'une incubation à température ambiante pendant 30 min. La lyse s'est poursuivie avec l'ajout de 33 μL de protéinase K (20 mg/mL) et 333 μL de tampon de lyse/liaison génomique PureLink, suivi d'une incubation à 55 °C pendant 1 h. La lyse physique a été réalisée par agitation de billes en ajoutant 2 g de billes de verre de 0,5 mm à l'échantillon et en vortexant à vitesse maximale pendant 10 min à l'aide d'un adaptateur vortex multitube.

L'ADN des échantillons enrichis en VLP a été amplifié par amplification par déplacement de plusieurs brins avec amorçage aléatoire par hexamère, selon le protocole du fabricant. L'ADN amplifié a été purifié avec 40 μL de billes AMPureXP et élué dans 15 μL de Tris 10 mM à pH 8,5.

333 μL d'éthanol à 100 % ont été ajoutés à l'échantillon et mélangés par inversion. L'échantillon complet a ensuite été chargé sur une colonne PureLink Genomic DNA Mini Kit. La purification et l'élution de l'ADN ont été réalisées à l'aide des pointes de l'appareil, avec une quantité d'élution de 25 μL d'EB. BL Lashes propose différents types de brosses et d'écouvillons conçus pour faciliter les différentes étapes de la pose d'extensions de cils : nettoyage, préparation, dépose et vente au détail. Les écouvillons-chaussettes en mousse à cellules ouvertes LTO70PESD20, lavés en salle blanche, sont dotés d'une tête thermosoudée et d'une poignée antistatique.

Les échantillons amplifiés ont été normalisés à 0,2 ng/µL et préparés pour le séquençage shotgun avec le kit Nextera XT et les index Nextera XT, conformément aux instructions du fabricant. Les échantillons indexés ont été quantifiés avec un équipement Qubit dsDNA HS, normalisés et regroupés. Le contrôle qualité final des banques a été réalisé à l'aide des kits Agilent TapeStation dsDNA 5 000 pb et 1 000 pb. Les banques finales ont été séquencées sur un Illumina MiSeq avec la chimie PE150 ou PE300, au Centre de génomique de l'UC Davis. Les échantillons ont été décongelés sur glace, puis vortexés pendant 2 minutes à vitesse maximale à l'aide d'un adaptateur vortex multitube pour remettre les cellules en suspension.

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