400 hisopos dentales desechables de colores

Los hisopos de algodón para óptica modelo LAB-10 se utilizan para limpiar ópticas pequeñas o áreas pequeñas de una óptica más grande. Seleccione el producto para comparar donde aparezcan las opciones "Añadir para comparar" o "Comparar".

Manteniendo el hisopo dentro del tubo, se realizó la lisis añadiendo 5 μL de NaCl 5 M y 45 μL de lisozima Ready-Lyse (250 U/μL), seguido de una incubación a temperatura ambiente durante 30 min. La lisis continuó con la adición de 33 μL de proteinasa K (20 mg/mL) y 333 μL de tampón de lisis/unión PureLink Genomic, seguido de una incubación a 55 °C durante 1 h. La lisis física se realizó mediante agitación de microesferas añadiendo 2 g de microesferas de vidrio de 0,5 mm a la muestra y agitando a máxima velocidad durante 10 min utilizando un adaptador de vórtice multitubo.

El ADN de muestras enriquecidas con VLP se amplificó mediante amplificación por desplazamiento de cadena múltiple con cebadores hexaméricos aleatorios, siguiendo el protocolo del fabricante. El ADN amplificado se purificó con 40 μL de microesferas AMPureXP y se eluyó en 15 μL de Tris 10 mM, pH 8,5.

Se añadieron 333 μL de etanol al 100% al patrón y se mezcló por inversión. El patrón completo se cargó en una columna PureLink Genomic DNA Mini Kit. La limpieza y elución del ADN se realizó con las puntas del equipo, con una cantidad de elución de 25 μL de EB. BL Lashes ofrece diversos tipos de cepillos e hisopos diseñados para facilitar las diversas etapas de la extensión de pestañas: limpieza, imprimación, preparación y retirada hasta la venta. Los hisopos de calcetín de espuma de celda abierta LTO70PESD20, lavables en sala limpia, cuentan con un cabezal termosellado y un mango con protección ESD.

Las muestras amplificadas se normalizaron a 0,2 ng/uL y se prepararon para la secuenciación shotgun con el paquete Nextera XT y los índices Nextera XT, según lo descrito por el fabricante. Las muestras indexadas se cuantificaron con un equipo Qubit dsDNA HS, se normalizaron y se agruparon. El control de calidad de la biblioteca final se realizó con kits Agilent TapeStation dsDNA de 5000 pb y 1000 pb. Las bibliotecas finales se secuenciaron en un Illumina MiSeq con química PE150 o PE300, en el Centro de Genoma de UC Davis. Las muestras se descongelaron en hielo y luego se agitaron en vórtex durante 2 minutos a velocidad máxima utilizando un adaptador multitubo para resuspender las células.

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